MICROPROPAGAÇÃO DE Arthrocereus glaziovii (K.Schum.) N. P. Taylor & Zappi: UMA ESPÉCIE EM PERIGO DE EXTINÇÃO DA FITOFISIONOMIA CAMPO RUPESTRE

Authors

  • Douglas Machado Leite douglas.leite1@ufla.br
    Laboratório de Cultivo in vitro de Espécies Florestais, Departamento de Ciências Florestais, Escola de Ciências Agrárias de Lavras, Universidade Federal de Lavras, Lavras, MG, Brasil. https://orcid.org/0000-0002-2275-8643
  • Julia Quaresma Siqueira Faria julia.faria@estudante.ufla.br
    Laboratório de Cultivo in vitro de Espécies Florestais, Departamento de Ciências Florestais, Escola de Ciências Agrárias de Lavras, Universidade Federal de Lavras, Lavras, MG, Brasil. https://orcid.org/0009-0000-6654-7701
  • Fabíola Magalhães Mendes fabiola.mendes2@estudante.ufla.br
    Laboratório de Cultivo in vitro de Espécies Florestais, Departamento de Ciências Florestais, Escola de Ciências Agrárias de Lavras, Universidade Federal de Lavras, Lavras, MG, Brasil. https://orcid.org/0000-0002-3029-4607
  • Gilvano Ebling Brondani gilvano.brondani@ufla.br
    Universidade Federal de Lavras https://orcid.org/0000-0001-8640-5719

DOI:

https://doi.org/10.31413/nat.v13i3.18577


Keywords:

In vitro culture, Canga, Cactaceae, Endemic species

Abstract

Arthrocereus glaziovii is a native Brazilian cactus, restricted to rocky outcrops. The species is at risk of extinction and has high potential for restoration of degraded areas of the Rupestrian Phytophysiognomy. The objective of this study was to establish a micropropagation protocol for A. glaziovii, testing seed exposure in times to active chlorine, in vitro multiplication under different carbon sources, growing medium, explant sectioning positions, and the presence or absence of light. The experiments were conducted in the inoculation and multiplication phases. The asepsis presented the best results at 5 minutes of exposure to chlorine. Regarding the carbon source, the presence of sucrose favored the aerial part growth of the plants. The median and upper sectioning positions favored the emergence of roots and shoots, while the lower position favored only shoot formation, and the presence of light resulted in the best responses. The acclimatization methodology adopted was excellent, with 96% plant survival.

References

ABO EL-ENIEN, H. E.; OMAR, M. A. Effect of some growth substances on rooting and endogenous hormones of Casimiroa edulis L. cuttings. Zagazig Journal of Agriculture Research, v. 45, n. 3, p. 891-904, 2018. http://dx.doi.org/10.21608/zjar.2018.49126

ARNHOLD, E. Package in the R environment for analysis of variance and complementary analyses. Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science, v. 50, n. 6, p. 488-492, 2013. https://doi.org/10.11606/issn.1678-4456.v50i6p488-492

BARBOSA, G. G.; TARGA, V. M. I.; OTONI, W. C.; RONDON, J. N.; COSTA, F. A. In vitro culture of zygotic embryo of baru as affected by sealing types and sucrose concentrations. Brazilian Journal of Development, v. 7, n. 4, p. 42390-42408, 2021. https://doi.org/10.34117/bjdv7n4-619

ESQUIVEL, F.; CASTILLO, A.; BENTANCOR, M.; CEPPA, M.; ROGEL, L.; BONILLA, M.B.; BALMELLI, G.; DALLA-RIZZA, M. Potential of metatopoline in the in vitro multiplication and rooting of Eucalyptus globulus Labill. clones. Cerne, v. 30, n. 1, e-103413, 2024. https://doi.org/10.1590/01047760202330013413

GOETTSCH, B.; HILTON-TAYLOR, C.; CRUZ-PIÑÓN, G.; et al. High proportion of cactus species threatened with extinction. Nature Plants, v. 1, n. 10, p. 1-7, 2015. https://doi.org/10.1038/nplants.2015.142

HESAMI, M.; PEPE, M.; MONTHONY, A. S.; BAITON, A.; JONES, A. M. P. Modeling and optimizing in vitro seed germination of industrial hemp (Cannabis sativa L.). Industrial Crops and Products, v. 110, e113753, 2021. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2021.113753

HUNG, C. D.; HONG, C. H.; JUNG, H. B.; KIM, S. K.; VAN KET, N.; NAM, M. W.; CHOI, D.; LEE, H. I. Growth and morphogenesis of encapsulated strawberry shoot tips under mixed LEDs. Scientia Horticulturae, v. 194, p. 194-200, 2015. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2015.08.016

JACOBI, C. M.; DO CARMO, F. F.; VINCENT, R. C.; STEHMANN, J. R. Plant communities on ironstone outcrops: a diverse and endangered Brazilian ecosystem. Biodiversity and Conservation, v. 16, n. 7, p. 2185-2200, 2007. https://doi.org/10.1007/s10531-007-9156-8

JUNGHANS, T. G.; SOUZA, A. S. da. Aspectos práticos da micropropagação de plantas. Cruz das Almas: Embrapa Mandioca e Fruticultura Tropical, 2009. 385p.

LAZAROTTO, M.; MUNIZ, M. F. B.; BELTRAME, R.; SANTOS, Á. F. D.; MACIEL, C. G.; LONGHI, S. J. Sanidade, transmissão via semente e patogenicidade de fungos em sementes de Cedrela fissilis procedentes da região sul do Brasil. Ciência Florestal, v. 22, n. 3, p. 493-503, 2012. https://doi.org/10.5902/198050986617

LEIFERT, C.; MURPHY, K. P.; LUMSDEN, P. J. Mineral and carbohydrate nutrition of plant cell and tissue cultures. Critical Reviews in Plant Science, v. 14, n. 2, p. 83-109, 1995. https://doi.org/10.1080/07352689509701923

LEITE, D. M.; FERNANDES, S. B.; SOUSA, K. I. R.; BRONDANI, G. E. Improvement in the production of micropropagated seedlings of Paliavana sericiflora Benth: an endangered species. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 156, a.n. 63, 2024. https://doi.org/10.1007/s11240-023-02677-2

LLOYD, G.; McCOWN, B. Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Combined Proceedings International Plant Propagators Society, v. 30, p. 421-427, 1980.

LÓPEZ, R. P.; VALDIVIA, S. The importance of shrub cover for four cactus species differing in growth form in an Andean semi‐desert. Journal of Vegetation Science, v. 18, n. 2, p. 263-270, 2007. https://doi.org/10.1111/j.1654-1103.2007.tb02537.x

MARCHI, M. N. G.; CIVATTI, L. M.; VIANA, C. M. Germinação in vitro de espécies de cactáceas nativas da Bahia com potencial ornamental. Revista RG News, v. 8, n. 2, p. 92-101, 2022.

MAZAROTTO, E. J.; SANTOS, Á. F. D.; SANTOS, F.; RÊGO, G. M. S.; PIMENTEL, I. C. Diversidade de Fungos Endofíticos em Sementes de Espécies Florestais Nativas na Região Sul do Brasil. Summa Phytopathologica, v. 49, e257357, 2023. https://doi.org/10.1590/0100-5405/257357

MOLINARI, L. V.; MARTINS, K. F.; NUNES, C. F.; MARTINS, E. R.; MEIRA, M. R. Óleos essenciais e benzilaminopurina (BAP) para o cultivo in vitro de Dimorphandra mollis. Pesquisa Florestal Brasileira, v. 41, p. 1-8, 2021. Phttps://doi.org/10.4336/2021.pfb.41e201901926

MONFORT, L. E. F.; PINTO, J. E. B. P.; BERTOLUCCI, S. K. V.; ROSSI, Z. T. T.; LIMA, A. F.; SILVA, S. T.; SILVA, G. M. D. Micropropagação e germinação de sementes in vitro de atroveran. Revista Ceres, v. 62, n. 2, p. 215-223, 2015. https://doi.org/10.1590/0034-737X201562020012

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and biossay with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v. 15, p. 473-497, 1962. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

NYFFELER, R.; EGGLI, U. A farewell to dated ideas and concepts: molecular phylogenetics and a revised suprageneric classification of the family Cactaceae. Schumannia, v. 6, p. 109-149, 2010. http://dx.doi.org/10.5167/uzh-43285

PORFÍRIO, K. DE P.; TITON, M.; CASTRO, A. C. M. de; PEREIRA, I. M.; KNEGT, R. A. P. de. Multiplicação in vitro de Xylopia aromatica em diferentes meios de cultura e concentrações de BAP. Pesquisa Florestal Brasileira, v. 39, n. 1, p. 1-7, 2019. https://doi.org/10.4336/2019.pfb.39e201901895

R. CORE TEAM. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria, 2022. Disponível em: https://www.r-project.org/.

RUTHS, R.; DA SILVA BONOME, L. T.; TOMAZI, Y.; SIQUEIRA, D. J.; MOURA, G. S.; LIMA, C. S. M. Produção de mudas de pitaya com diferentes segmentos de cladódio e reguladores de crescimento vegetal. Research, Society and Development, v. 10, n. 3, e13230, 2021. https://doi.org/10.33448/rsd-v10i3.13230

SILVA, J. H. C. S.; DE AZERÊDO, G. A. Germination of cactus seeds under saline stress. Revista Caatinga, v. 35, n. 1, p. 79-86, 2022. https://doi.org/10.1590/1983-21252022v35n108rc

SILVA, K. B. da; REINIGER, L. R. S.; RABAIOLLI, S. M. dos S.; ZIEGLER, A. C. da F.; STEFANEL, C. M. Efeito de diferentes períodos de cultivo na micropropagação de brotações de Luehea divaricata. Pesquisa Florestal Brasileira, v. 41, p. 1-6, 2021. https://doi.org/10.4336/2021.pfb.41e201901921

SKIRYCZ, A.; CASTILHO, A.; CHAPARRO, C.; CARVALHO, N.; TZOTZOS, G.; SIQUEIRA, J. O. Canga biodiversity, a matter of mining. Frontiers in Plant Science, v. 5, e653, 2014. https://doi.org/10.3389/fpls.2014.00653

SOUZA, D. M. S. C.; MARTINS, A. R.; FERNANDES, S. B.; SANTOS, J. A. dos; BRONDANI, G. E. Seedling production of Mimosa calodendron Mart. ex Benth. in a temporary immersion bioreactor. Nativa, v. 10, n. 1, p. 117-124, 2023. https://doi.org/10.31413/nativa.v10i1.13351

THAKUR, R. C.; KARNOSKY, D. F. Micropropagation and germplasm conservation of Central Park Splendor Chinese elm (Ulmus parvifolia Jacq.‘A/Ross Central Park’) trees. Plant Cell Reports, v. 26, n. 8, p. 1171-1177, 2007. https://doi.org/10.1007/s00299-007-0334-7

WENDLING, I.; BRONDANI, G. E.; DUTRA, L. F.; HANSEL, F. A. Mini-cuttings technique: a new ex vitro method for clonal propagation of sweetgum. New Forests, v. 39, p. 343-353, 2010. https://doi.org/10.1007/s11056-009-9175-2

YAO, Y.; ZHANG, P.; LIU, H.; LU, Z.; YAN, G. A fully in vitro protocol towards large-scale production of recombinant inbred lines in wheat (Triticum aestivum L.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), v. 128, p. 655-661, 2017. https://doi.org/10.1007/s11240-016-1145-8

ZAPPI, D.; TAYLOR, N. P. Cactaceae Juss. Flora e Funga do Brasil, [s. d.]. Disponível em: https://floradobrasil.jbrj.gov.br/FB70. Acessado em: 28 Jul. 2024.

Published

2025-08-19

Issue

Section

Engenharia Florestal / Forest Engineering

How to Cite

MICROPROPAGAÇÃO DE Arthrocereus glaziovii (K.Schum.) N. P. Taylor & Zappi: UMA ESPÉCIE EM PERIGO DE EXTINÇÃO DA FITOFISIONOMIA CAMPO RUPESTRE. (2025). Nativa, 13(3), 434-439. https://doi.org/10.31413/nat.v13i3.18577

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