EVALUATION OF THE REDOX STATE OF swiss MICE TREATED WITH Cnidoscolus urens AND SCOPOLAMINE
DOI:
https://doi.org/10.31413/nat.v14i2.20745Palavras-chave:
oxidative stress, antioxidants, cansanção-brancoResumo
Avaliação do estado redox de camundongos Swiss tratados com Cnidoscolus urens e escopolamina
RESUMO: A atividade antioxidante de uma espécie vegetal promissora, a Cnidoscolus urens (CU), pode ser investigada por meio de seus efeitos sobre o estado redox de um organismo exposto à escopolamina (ESC), um indutor de estresse oxidativo. Neste estudo, avaliou-se o efeito do extrato etanólico de CU sobre o estado redox de camundongos Swiss tratados com ESC. Os animais foram divididos em três grupos: controle (C; solução fisiológica), ESC (0,8 mg kg-1) e ESC+CU (0,8 mg kg-1 + 150 mg kg-1). Foram analisados enzimas antioxidantes, marcadores não enzimáticos e indicadores de dano oxidativo no coração, no fígado e nos rins. No fígado e nos rins, não houve alterações nas atividades enzimáticas. No coração, a atividade da catalase aumentou apenas no grupo ESC. Os marcadores não enzimáticos não diferiram entre os grupos em nenhum dos tecidos. Em todos os tecidos, o marcador de dano lipídico no grupo ESC aumentou significativamente, mas somente no fígado houve redução nesse parâmetro com a coadministração de CU. Esses resultados indicam que a escopolamina teve impacto no estado redox desses tecidos, particularmente nas estruturas lipídicas, e que o extrato de C. urens não foi capaz de modular enzimas antioxidantes, mas teve efeito protetor contra a lipoperoxidação no tecido hepático.
Palavras-chave: estresse oxidativo; antioxidantes; cansanção-branco.
Referências
AKBARIAN, M.; MIRZAVI, F.; AMIRAHMADI, S.; HOSSEINI, M.; ALIPOUR, M.; FEIZI, H.; RAJABIAN, A. Amelioration of oxidative stress, cholinergic dysfunction, and neuroinflammation in scopolamine-induced amnesic rats fed with pomegranate seed. Inflammopharmacology, v. 30, n. 3, p. 1021-1035, 2022. https://doi.org/10.1007/s10787-022-00971-7
BORGES, L. P.; AMORIM, V. A. Metabólitos Secundários de Plantas. Revista Agrotecnologia, v. 11, n. 1, p. 54-67, 2020.
BRADFORD, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, v. 72, n. 1-2, p. 248-254, 1976. https://doi.org/10.1016/0003-2697(76)90527-3
BRUNTON, L. L.; KNOLLMAN, B.; HILAL-DANDAN, R. Goodman & Gilman’s The Pharmacological Basis of Therapeutics. 13th ed. Porto Alegre: ArtMed, 2018. 5310p.
BUEGE, J. A.; AUST, S. D. Microsomal lipid peroxidation. Methods in Enzymology, v. 52, n. C, p. 302-310, 1978. https://doi.org/10.1016/s0076-6879(78)52032-6
COLOMBO, G.; CLERICI, M.; GARAVAGLIA, M. E.; GIUSTARINI, D.; ROSSI, R.; MILZANI, A.; DALLE-DONNE, I. A step-by-step protocol for assaying protein carbonylation in biological samples. Journal of Chromatography B, v. 1019, p. 178-190, 2016. https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2015.11.052
DUTRA, M. K. M.; FERREIRA, T. Y. F.; LIMA, J. M. S. de A.; MACEDO, M. C. S.; FERREIRA, M. S.; KHAN, A.; FERNANDES, R. M. T. Avaliação fitoquímica e quantificação de fenóis e flavonoides dos extratos da espécie vegetal Cnidoscolus urens (L.) Arthur. Cuadernos de Educación y Desarrollo, v. 16, n. 8, e5251, 2024. https://doi.org/10.55905/cuadv16n8-112
EZEBUIRO, I.; OBIANDU, C.; SARONEE, F.; OBIANDU, A. C. Effects of Leaf Extract of Cnidoscolus aconitifolius on Serum Lipids and Oxidative Stress Markers of Male Wistar Rats. Asian Journal of Biochemistry, Genetics and Molecular Biology, v. 5, p. 47-52, 2020. https://doi.org/10.9734/AJBGMB/2020/V5I130120
HABIG, W. H.; PABST, M. J.; JAKOBY, W. B. Glutathione S-Transferases: The First Enzymatic Step in Mercapturic Acid Formation. Journal of Biological Chemistry, v. 249, n. 22, p. 7130-7139, 1974. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(19)42083-8
HAMBLETON, I. R.; CAIXETA, R.; JEYASEELAN, S. M.; LUCIANI, S.; HENNIS, A. J. M. The rising burden of non-communicable diseases in the Americas and the impact of population aging: a secondary analysis of available data. The Lancet Regional Health – Americas, v. 21, p. e100483, 2023. https://doi.org/10.1016/j.lana.2023.100483
IBGE_Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Projeção da população do Brasil e Unidades da Federação por sexo e idade para o período 2000-2070. Rio de Janeiro: [s. n.]. Available at: https://www.ibge.gov.br/estatisticas/sociais/populacao/9 109-projecao-da-populacao.html> Accessed 29 November 2025.
JI, L. L.; YEO, D. Oxidative stress: an evolving definition. Faculty Reviews, v. 10, p. 13, 2021. https://doi.org/10.12703/R/10-13
JOMOVA, K.; RAPTOVA, R.; ALOMAR, S. Y.; ALWASEL, S. H.; NEPOVIMOVA, E.; KUCA, K.; VALKO, M. Reactive oxygen species, toxicity, oxidative stress, and antioxidants: chronic diseases and aging. Archives of Toxicology, v. 97, n. 10, p. 2499-2574, 2023. https://doi.org/10.1007/S00204-023-03562-9
KATERJI, M.; FILIPPOVA, M.; DUERKSEN-HUGHES, P. Approaches and Methods to Measure Oxidative Stress in Clinical Samples: Research Applications in the Cancer Field. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, v. 2019, e29, 2019. https://doi.org/10.1155/2019/1279250
LIMA, V. S.; EMERICK, G. L.; SINHORIN, V. D. G.; LIMA, R. R. da S.; SILVA, H. S. da; SILVA, K. F. da; DOUSA, A. C. A. de; SILVEIRA, F. R.; SAITO, A. L. M.; ESTEVAM, E. L.; LATORRACA, M. Q. Piracetam reverses scopolamine-induced memory disorder in mice: an animal model using behavioral, oxidative, and cholinesterase biomarkers. Neuroscience Letters, v. 871, e138462, 2026. https://doi.org/10.1016/J.NEULET.2025.138462
LU, J.-Z.; HONG, D.-D.; YE, D.; MU, S.; SHI, R.; SONG, Y.; FENG, C.; MA, B.-. Tissue distribution and integrated pharmacokinetic properties of major effective constituents of oral Gegen-Qinlian decoction in mice. Frontiers in Pharmacology, v. 13, e996143, 2022. https://doi.org/10.3389/fphar.2022.996143
MAS-BARGUES, C.; GARCÍA-DOMÍNGUEZ, E.; BORRÁS, C. Recent approaches to determine static and dynamic redox state-related parameters. Antioxidants, v. 11, n. 5, e864, 2022. https://doi.org/10.3390/ANTIOX11050864
MAYA-LASTRA, C. A.; TORRES, D. S. C.; CORDEIRO, I.; SILVA, O. L. M. Cnidoscolus urens (L.) Arthur. Available at: https://floradobrasil2020.jbrj.gov.br/FB17495. Accessed 7 December 2025.
MISRA, H. P.; FRIDOVICH, I. The Role of Superoxide Anion in the Autoxidation of Epinephrine and a Simple Assay for Superoxide Dismutase. Journal of Biological Chemistry, v. 247, n. 10, p. 3170-3175, 1972. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(19)45228-9
MOURA, L. F. W. G.; SILVA NETO, J. X. da; LOPES, T. D. P.; BENJAMIN, S. R.; BRITO, F. C. R.; MAGALHÃES, F. E. A.; FLOREAN, E. O. P. T.; SOUSA, D. de O. B. de; GUEDES, M. I. F. Ethnobotanic, phytochemical uses and ethnopharmacological profile of genus Cnidoscolus spp. (Euphorbiaceae): A comprehensive overview. Biomedicine & Pharmacotherapy, v. 109, p. 1670-1679, 2019. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.10.015
NASCIMENTO, J. B. do; VITURINO, J. J. F.; RIBEIRO, M. A. M.; COSTA, J. G. M. da. Nutritional value, ethnopharmacology, chemistry, and biological activities of species of the genus Cnidoscolus: an updated review. Foods, v. 14, n. 12, e2092, 2025. https://doi.org/10.3390/foods14122092
NELSON, D. P.; KIESOW, L. A. Enthalpy of decomposition of hydrogen peroxide by catalase at 25 degrees C (with molar extinction coefficients of H2O2 solutions in the UV). Analytical Biochemistry, v. 49, n. 2, p. 474-478, 1972. https://doi.org/10.1016/0003-2697(72)90451-4
NYBERG, S. T.; SINGH-MANOUX, A.; PENTTI, J.; MADSEN, I. E. H.; SABIA, S.; ALFREDSSON, L.; BJORNER, J. B.; BORRITZ, M.; BURR, H.; …; KIVIMÄKI, M. Association of healthy lifestyle with years lived without major chronic diseases. JAMA Internal Medicine, v. 180, n. 5, p. 760-768, 2020. https://doi.org/10.1001/jamainternmed.2020.0618
OBICHI, E.; MONAGO, C.; BELONWU, D. Effect of Cnidoscolus aconitifolius (Family Euphorbiaceae) aqueous leaf extract on some antioxidant enzymes and hematological parameters of high-fat diet and Streptozotocin induced diabetic Wistar albino rats. Journal of Applied Sciences and Environmental Management, v. 19, n. 2, p. 201-209, 2015. https://doi.org/10.4314/JASEM.V19I2.5
PADRÓN-MONEDERO, A. A pathological convergence theory for non-communicable diseases. Aging Medicine, v. 6, n. 4, p. 328-337, 2023. https://doi.org/10.1002/AGM2.12273
PAGLIA, D. E.; VALENTINE, W. N. Studies on the quantitative and qualitative characterization of erythrocyte glutathione peroxidase. The Journal of Laboratory and Clinical Medicine, v. 70, n. 1, p. 158-169, 1967. https://doi.org/10.5555/URI:PII:0022214367900765
PEOPLES, J. N.; SARAF, A.; GHAZAL, N.; PHAM, T. T.; KWONG, J. Q. Mitochondrial dysfunction and oxidative stress in heart disease. Experimental and Molecular Medicine, v. 51, n. 12, p. 1-13, 2019. https://doi.org/10.1038/s12276-019-0355-7
PÉREZ-GONZÁLEZ, M. Z.; SIORDIA-REYES, G.; DAMIÁN-NAVA, P.; HERNÁNDEZ-ORTEGA, S.; MACÍAS-RUBALCAVA, M. L.; JIMÉNEZ-ARELLANES, M. A. Hepatoprotective and anti-inflammatory activities of the Cnidoscolus chayamansa (Mc Vaugh) leaf extract in chronic models. Evidence-based Complementary and Alternative Medicine, v. 2018, e3896517, 2018. https://doi.org/10.1155/2018/3896517
ROE, J. H. Chemical determination of ascorbic, dehydroascorbic, and diketogulonic acids. Methods of Biochemical Analysis, v. 1, p. 115-140, 1954. https://doi.org/10.1002/9780470110171.CH5
SEDLAK, J.; LINDSAY, R. H. Estimation of total, protein-bound, and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellman’s reagent. Analytical Biochemistry, v. 25, n. C, p. 192-205, 1968. https://doi.org/10.1016/0003-2697(68)90092-4
WOO, Y.; LIM, J. S.; OH, J.; LEE, J. S.; KIM, J.-S. Neuroprotective Effects of Euonymus alatus Extract on Scopolamine-Induced Memory Deficits in Mice. Antioxidants, v. 9, n. 5, e449, 2020. https://doi.org/10.3390/antiox9050449
WHO_World Health Organization. Global health estimates: Leading causes of death. Available at: <https://www.who.int/data/gho/data/themes/mortality-and-global-health-estimates/ghe-leading-causes-of-death>. Accessed 28 November 2025.
YADANG, F. S. A.; NGUEZEYE, Y.; KOM, C. W.; BETOTE, P. H. D.; MAMAT, A.; TCHOKOUAHA, L. R. Y.; TAIWÉ, G. S.; AGBOR, G. A.; BUM, E. N. Scopolamine-induced memory impairment in mice: neuroprotective effects of Carissa edulis (Forssk.) Valh (Apocynaceae) aqueous extract. International Journal of Alzheimer’s Disease, v. 2020, n. 1, e6372059, 2020. https://doi.org/10.1155/2020/6372059
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