extratos florais de Tabebuia roseoalba e Jacaranda cuspidifolia. Flores de T. roseoalba e J. cuspidifolia foram coletadas e

os extratos hidroetanólicos produzidos por maceração. A triagem fitoquímica foi realizada qualitativamente

através de diferentes reagentes colorimétricos e de precipitação. A atividade antifúngica foi realizada em

diferentes concentrações dos extratos florais pelo método de difusão em ágar sobre Sclerotinia sclerotiorum,

Colletotrichum acutatum, Colletotrichum gloeosporioides e Rhizopus stolonifer. A triagem fitoquímica demonstrou a

presença de diversas classes fitoquímicas. A atividade antifúngica foi relatada para as quatro cepas de

action on the floral extracts of Tabebuia roseoalba and Jacaranda cuspidifolia. Flowers of T. roseoalba and J. cuspidifolia

performed qualitatively using different colorimetric and precipitation reagents. The antifungal activity was

performed at different concentrations of the floral extracts by the agar diffusion method on Sclerotinia

sclerotiorum, Colletotrichum acutatum, Colletotrichum gloeosporioides and Rhizopus stolonifer. Phytochemical screening

demonstrated the presence of several phytochemical classes. Antifungal activity was reported for the four

phytopathogenic strains, especially for C. acutatum and C. gloeosporioides for the floral extract of T. roseoalba and

nativas do domínio Cerrado florescem apresentando

diversificada composição de cores entre as fitofisionomias

desse ambiente natural. A família Bignoniaceae apresenta

distribuição Pantropical incluindo 120 gêneros e 800

espécies. No Brasil, são descritas mais de 400 espécies

tratando de uma família bem estabelecida e diversificada na

América do Sul (FILHO; BORGES, 2018). Espécies dos

“jacarandás” apresentam belas e aromáticas flores que são

alvos de diversas espécies de insetos polinizadores, na

antigonorréica, antimalárico, antitumoral, antiviral,

antiulcerativa (SERRA et al., 2020; OKI et al., 2020;

KRAUSE et al., 2022).

humano no tratamento de afecções, os vegetais apresentam

diversos grupos de metabólitos especiais que apresentam

fitomoléculas capazes de inibirem o desenvolvimento de

diversos grupos de fitopatógenos, inclusive fungos como

cinza” em diversas frutíferas como mamão, abacate e

importante uma pesquisa acurada sobre essa constituição e

ação antifúngica.

Este estudo teve como objetivo avaliar através de triagem

fitoquímica e ensaio antifúngico sobre fitopatógenos

agrícolas avaliando extratos hidroetanólicos florais de

Tabebuia roseoalba (ipê-branco) e Jacaranda cuspidifolia

(carobinha).

identificadas pelo primeiro autor, e duas exsicatas, foram

herborizadas e depositadas no Herbário do Laboratório de

Sistemática Vegetal do Programa de Pós-Graduação em

Biodiversidade e Conservação com os seguintes Vouchers

(HRV: 2185 e 2186) respectivamente.

Os extratos hidroetanólicos florais de T. reseoalba e J.

cuspidifolia, foram obtidos utilizando etanol 70% (250 g de

flores) como solvente e refluxo em aparelho tipo Soxhlet até

orgânicos, alcalóides, carboidratos, azulenos, resinas,

flavonoides, cumarinas, açúcares redutores, açúcares não

redutores, glicosídeos, glicosídeos cardíacos, aminoácidos,

taninos, flobataninos, florotaninos, fitosteróis, terpinóides,

Diterpenos, ligninas, quinonas, ácidos carboxílicos,

saponinas espumídicas, saponinas hemolíticas, óleos voláteis,

compostos aromáticos e alifáticos, proteínas, fenólicos,

triterpenóides, antraquinonas, antocianinas,

Leucoantocianinas, resinas, óleo fixo e oxilatos foram

realizados seguindo o método descrito por Menezes Filho et

determinar a atividade antifúngica sobre S. sclerotiorum, C.

acutatum, C. gloeosporioides e R. stolonifer conforme descrito por

Toigo et al. (2022) com adaptações. As cepas utilizadas estão

depositadas e identificadas no Banco Micológico do

Laboratório de Química Tecnológica (SS12-21, CA15-67,

CG 16-21 e RS 11-11) respectivamente, doadas pelo

Laboratório de Química de Produtos Naturais e

Microbiologia Agrícola do IF Goiano, Campus Rio Verde,

GO, Brasil. As cepas fúngicas foram cultivadas a 20 °C por

10 dias para S. sclerotiorum e 28 °C por 3-5 dias para as demais

renderizar doses entre 25-300 µL mL-1, em cada placa foi

pipetado 500 µL da concentração. As placas foram

transferidas para incubadora a 20 °C (10 dias) e 28 °C (3-5

dias), respectivamente. O diâmetro da zona de inibição foi

medido e registrado como um indicador de atividade

antifúngica e expresso em porcentagem (%) utilizando

paquímetro digital. O fungicida comercial de referência

Frowncide 500 SC foi usado como controle positivo (dose de

5 µL mL-1). O emulsificante Tween 80 também foi avaliado

na dose mais baixa sob investigação (25 µL mL-1). Os ensaios

de difusão em ágar aplicados a ambos os extratos florais

contra os quatro fungos foram realizados em quadruplicata.

O crescimento micelial foi medido diariamente até o

crescimento completo dos fungos separadamente em placas

controle. O delineamento experimental foi inteiramente

casualizado. Os dados foram submetidos à análise de

variância (ANOVA) e as médias dos tratamentos foram

cerevisiae) e Trichophyton (T. mentagrophytes) para o extrato

diclorometano da casca de T. avellanedae (KRAUSE et al.,

2022). Diversos estudos apresentam bons resultados sobre a

fitomolécula lapachol como sendo responsável pela eficiente

atividade fungicida e bactericida como é discutido em um

estudo de revisão proposto por Medeiros et al. (2015). Além

disso, atividade de inibição de gêneros bacterianos como

Micobacterium, Treponema e Neisseria são registrados para

extratos e frações produzidos a partir de espécies do gênero

botânico Jacaranda sp. (GACHET; SCHUHLY, 2009;

SERRA et al., 2020).

cuspidifolia demonstraram nos testes qualitativos, possuir

diversos grupos de fitomoléculas com alto grau de

importância a partir dos extratos hidroetanólicos. Em

especial, a grupos de compostos naturais com características

antifúngica no controle de fitopatógenos agrícolas Sclerotinia

FAPEG – Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de

Goiás; aos Laboratórios de Química Tecnológica e Águas e

Efluentes; ao Herbário do Laboratório de Sistemática Vegetal

do IF Goiano – Campus Rio Verde, GO, Brasil.

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